更新时间:2025-12-25
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在传染病血清学检测的发展历程中,早期检测依赖补体固定、血凝抑制试验等生物学方法,这类方法以红细胞凝集或溶血现象作为抗体存在的判定依据,且需满足4 倍稀释滴度差异,才能认定抗体水平存在显著变化。
20 世纪 90 年代后,酶免疫分析(EIA)技术兴起,传染病抗体检测逐步升级为微孔板 EIA 及自动化检测平台。无论是比色法、免疫荧光法还是化学发光法,均以反应信号强度作为结果判定依据,核心指标为信号截止(S/CO)比率。该比率是将患者样本信号与制造商设定的临界值(CO)对比得出的相对单位,其中 CO 是区分样本中是否含有目标分析物的关键阈值。
随着高通量免疫测定平台的普及,传染病检测逐渐从微生物实验室整合至医院 “中心实验室”,检测流程与质量控制体系均纳入统一管理,且多沿用临床化学检测的传统质控方法。但二者存在本质区别:临床化学检测(如葡萄糖、钾离子检测)的分析物性质稳定,可基于国际标准进行校准,结果以国际单位制(SI)呈现;而传染病检测的 S/CO 值易受多重因素干扰,既包括抗体自身特性(如亲和力与亲合力、致病因子基因型 / 亚型、疾病进展阶段、患者免疫状态),也涉及检测方法本身(如抗原靶点选择、标记抗体类型、信号检测化学体系)。
质量控制(QC)是 ISO 15189 认证实验室的硬性要求,其核心定义为 “通过内部控制程序监控检测全过程,判定系统运行状态,保障检测结果的可靠性”,同时需具备监测试剂批次与校准品批次间差异的能力。澳大利亚国家测试机构协会(NATA)的 ISO 15189 应用文件进一步强调,实验室需建立长期质控结果监控体系,以此评估检测方法的稳定性。
在实际应用中,多数实验室默认使用试剂盒配套质控品满足质控要求。这类质控品的核心作用是验证检测方法的有效性:在检测患者样本前,需先通过配套质控测试,结果在控方可开展临床检测。配套质控品的可接受标准由制造商通过上市前临床试验确定,结果在控意味着检测系统达到制造商宣称的灵敏度与特异性。
但试剂盒配套质控品存在明显短板:一是可接受范围宽泛,这与传染病血清学检测的特性相关 —— 检测信号需发生显著变化,才能反映抗体水平的真实差异;二是对检测系统的长期变化不敏感,仅能验证单次检测的有效性,无法监测检测系统随时间推移的性能漂移,难以识别试剂批次更换、仪器状态波动等因素带来的影响。
理想的第三方质控品需满足两个核心条件:一是由非试剂生产企业的体外诊断(IVD)制造商提供,避免因利益关联导致的质控偏差;二是具备临床相关性,其浓度水平需处于或接近临床决策临界值,且能敏感反映检测系统的性能变化。
从免疫测定的技术特性来看,多数检测方法的剂量 - 反应曲线呈 S 型:在分析物浓度较低时,信号增长缓慢;浓度达到一定范围后,信号与浓度呈线性相关;当分析物过量时,信号趋于饱和。因此,第三方质控品的反应性需落在曲线的线性区间,才能精准捕捉检测系统的细微变化。
此外,第三方质控品的检测结果可通过Levey-Jennings 质控图进行可视化分析。若第三方质控品自身批间变异度低,多批次检测数据可用于评估检测系统的长期精密度与偏倚,为检测方法的稳定性提供客观依据。

综上,试剂盒配套质控品与第三方质控品的作用互补而非替代:前者用于验证单次检测的有效性,后者用于监测检测系统的长期性能。对于 ISO 15189 认证实验室而言,二者的联合使用是保障传染病检测结果可靠性的最优方案。
目前,关于第三方质控品可接受范围的设定,行业指导文件仍较为有限。NATA 应用文件仅要求实验室建立长期质控监控体系,澳大利亚国家病理学认证咨询委员会(NPAAC)虽提出定量检测需基于实验室自身数据确定靶值与标准差(SD),但未明确具体方法。临床化学领域常用的均值 ±n 倍标准差法,以及 Westgard 质控规则,虽被逐步引入传染病检测的质控流程,但在实际应用中存在明显问题:传染病检测易受试剂批次间变异影响,若基于 20-30 组质控数据建立范围,更换试剂批次后极易出现假失控现象。此时实验室将陷入两难:若依据失控结果拒绝新批次试剂,配套质控品结果往往在控,证明试剂灵敏度与特异性未发生改变;若重新采集数据计算范围,则会陷入 “批次更换 — 失控 — 重新定标” 的循环,且难以向监管机构解释多套可接受标准的合理性。究其本质,试剂批次更换导致的质控结果偏移,源于系统偏倚而非检测系统不精确度,单纯重新计算均值与标准差,并未解决 “试剂批次间可接受变异范围” 这一核心问题。因此,第三方质控品可接受范围的设定需遵循两个基本原则:一是基于实验室自身检测数据,以科学证据为支撑,而非盲目套用其他方法学的质控规则;二是结合临床应用场景,正如 ISO 15198 标准所述,同一检测项目的性能标准需适配不同临床需求,且实验室需留存相关验证数据,以备评审核查。
